Viabilidade de sementes de aveia preta no solo em função do tempo de enterrio
DOI:
https://doi.org/10.5965/223811712332024448Palavras-chave:
Survival, seed bank, soil, germination, tetrazolium.Resumo
Este trabalho teve como objetivo verificar se há efeito temporal na previsão de sementes de aveia preta em condições naturais após a colheita, sob enterro. Os tratamentos foram arranjados em esquema bifatorial, com cinco genótipos de aveia preta e oito períodos de exumação (90; 180; 270; 360; 450; 540; 630 e 720 dias após o enterro), distribuídos em quatro repetições de cem sementes enterradas a 10 cm de profundidade. Após cada exumação, separação e contagem das sementes, aquelas que não germinaram, não apodreceram ou foram predadas foram consideradas como sementes inteiras, que passaram por processo de assepsia e especificadas para verificação das previsões pelo teste de germinação e vigor pelo teste de tetrazólio. Os genótipos apresentaram percentual de sementes decrescente ao longo do tempo, Agro Planalto apresentou o menor percentual aos 360 dias após o enterro, Agro Esteio aos 450 dias, Agro Coxilha, Agro Quaraí e Agro Zebu aos 540 dias. A porcentagem de sementes vivas diferentes entre os genótipos apenas no terceiro período de exumação (270 dias após o enterro), os menores percentuais de sementes vivas foram identificados nos genótipos Agro Esteio e Agro Planalto aos 360 dias após o enterro, em Agro Coxilha e Agro Quaraí aos 450 dias e Agro Zebu aos 540 dias. As sementes de aveia preta permanecem viáveis no solo por um período de 450 dias após o enterro.
Downloads
Referências
AGOSTINETTO D et al. 2001. Arroz vermelho: Ecofisiologia e estratégias de controle. Ciência Rural 31: 341-349.
AISENBERG GR et al. 2016. Effect pf pre-emergent herbicides on the germination and initial growth of Trifolium repens L. International Journal of Current Research 8: 39600-39606.
ARCO MJS et al. 1995. Seed dynamics in populations of Avena sterilis ssp. Ludoviciana. Weed Research 35: 477-487.
BASKIN CC & BASKIN JM. 2014. Seeds: ecology, biogeography, and evolution of dormancy and germination 2.ed. San Diego: Elsevier.
BRASIL. 2013. Instrução Normativa nº 45, de 17 de setembro de 2013. Brasília: Diário Oficial da República Federativa do Brasil. 18 set. 2013. Seção 1. p.16.
BRASIL. 2009. Ministério da Agricultura Pecuária e Abastecimento. Regras para análise de sementes. Brasília: Mapa/ACS. 399p.
DUBAL ITP et al. 2016. Effect of temperature on bean seed germination: vigor and isozyme expression. American Journal of Agricultural Research 1: 1-9.
EMBRAPA. 2018. Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária. Centro Nacional de Pesquisa de Solos. Sistema brasileiro de classificação de solos. 5.ed. Brasília: Embrapa - Centro Nacional de Pesquisa de Solos. 356p.
FERRARI M et al. 2016. Qualidade fisiológica de lotes de sementes de Brachuaria brizantha submetidas à superação de dormência. Revista Sodebras 10: 1-5.
FREY L.1991. Distribution of Avena strigosa (Poaceae) in Europe. Fragmenta Floristica et Geobotanica 1: 281-288.
GALVAN J. 2013. Banco de sementes e fluxo gênico de azevém sensível e resistente ao herbicida glifosato. 200f. Tese (Doutorado em Agronomia). Passo Fundo: UPF. 184p.
GFELLERA A et al. 2018. Explanations for Amaranthus retroflexus growth suppression by cover crops. Crop Protection 104: 11-20.
GRUNDY AC & MEAD A. 2000. Modeling weed emergence as a function of meteorological records. Weed Science 48: 594-603.
HOSSAIN MM & BEGUM M. 2015. Soil weed seed bank: Importance and management for sustainable crop production- A Review. Journal of the Bangladesh Agricultural University 13: 221–228.
LACERDA ALS et al. 2005. Levantamento do banco de sementes em dois sistemas de manejo de solo irrigados por pivô central. Planta Daninha 23: 1-7.
LUSH WM et al. 1981. Presowing hydration-dehydration treatments in relation to seed germination and early seedling growth of wheat and ryegrass. Functional Plant Biology 8: 409-425.
LORO MV et al. 2021. Relationships of primary and secondary wheat yield components. Brazilian Journal of Agriculture-Revista de Agricultura 96: 261-276.
MAHAJAN G et al. 2021. Seed longevity and seedling emergence behavior of wild oat (Avena fatua) and sterile oat (Avena sterilis ssp. ludoviciana) in response to burial depth in eastern Australia. Weed Science 69: 362-371.
MENNAN H & NGOUAJIO M. 2006. Seasonal cycles in germination and seedling emergence of summer and winter populations of catchweed bedstraw (Galium aparine) and wild mustard (Brassica kaber). Weed Science 54: 114-120.
MOURA NB et al. 2021. Akaike criteria and physiological indexes on black oak seeds. Communications in Plant Sciences 11: 22-29.
NORO G et al. 2003. Gramíneas anuais de inverno para produção de forragem: avaliação preliminar de genótipos. Agrociência 7: 35-40.
PESKE ST et al. 1997. Sobrevivência de sementes de arroz-vermelho depositadas no solo. Revista Brasileira de Agrociência 3: 17-22.
PETERS NCB. 1982. Production and dormancy of wild oat (Avena fatua) seed from plants grown under soil waterstress. Annals of Applied Biology 100: 189-196.
PIN EA et al. 2011. Forage production dynamics of winter annual grasses sown on different dates. Revista Brasileira de Zootecnia 40: 509-517.
QUADROS FLF & MARASCHIN GE. 1987. Desempenho animal em misturas de espécies forrageiras de estação fria. Pesquisa Agropecuária Brasileira 22: 535-541.
R CORE TEAM. 2019. R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria. 2019. Disponível em: < https://www.R-project.org/>.
RANGEL MAS et al. 2002. Manejo da aveia preta em sistema de produção Agropecuário integrado. Dourados: Embrapa Agropecuária Oeste (Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento 13).
RIZZARDI MA & VARGAS L. 2005. Papel trocado. Revista Cultivar 75: 28-30.
ROS CO & AITA C. 1996. Efeito de espécies de inverno na cobertura de solo e fornecimento de nitrogênio ao milho em plantio direto, Revista Brasileira de Ciência do Solo 20: 135-140.
SCHWARTZ-LAZARO LM & COPES JT. 2019. A review of the soil seedbank from a weed scientists perspective. Agronomy 9: 1-13.
SUTTIE JM & REYNOLDS SG. 2004. Background to fodder oats worldwide In: SUTTIE JM & REYNOLDS SG. Plant Prodution and Protection Series. Roma: FAO.
THOMPSON K & GRIME JP. 1979. Seasonal variation in the seed banks of herbaceous species in ten contrasting habitats. Journal of Ecology 67: 893-921.
THURSTON JM. 1961. The effect of depth of burying and freqtsency of cultivation on survival and germination of wild oats (Avena fatue L. and A. ludoviciana Dur,). Weed Research 1: 19-31.
VAN ACKER RC. 2009. Weed biology serves practical weed management. Weed Research 49: 1-5.
VOLIS S. 2009. Seed-related traits and their adaptive role in population differentiation in Avena sterilis along an aridity gradient. Israel Journal of Plant Sciences 57: 79-90.
ZORNER PS et al. 1984. Sources of viable seed loss in buried dormant and non-dormant populations of wild oat (Avena fatua L.) seed in Colorado. Weed Research 24: 143-150.
Downloads
Publicado
Como Citar
Edição
Seção
Licença
Copyright (c) 2024 Autores e Revista de Ciências Agroveterinárias
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
Os autores que publicam nesta revista estão de acordo com os seguintes termos:
a) Os autores mantêm os direitos autorais e concedem à revista os direitos autorais da primeira publicação, de acordo com a Creative Commons Attribution Licence. Todo o conteúdo do periódico, exceto onde está identificado, está licenciado sob uma Licença Creative Commons do tipo atribuição BY.
b) Autores têm autoridade para assumir contratos adicionais com o conteúdo do manuscrito.
c) Os autores podem fornecer e distribuir o manuscrito publicado por esta revista.
