Avaliação quantitativa e bioatividade de um biofilme perifítico oriundo de piscicultura

Autores

  • Jéssica Lucinda Saldanha da Silva Universidade Federal do Ceará, Fortaleza. CE.
  • Marina Teresa Torres Rodríguez Universidade Federal do Ceará, Fortaleza. CE.
  • Fátima Cristiane Teles de Carvalho Universidade Federal do Ceará, Fortaleza. CE.
  • Oscarina Viana de Sousa Universidade Federal do Ceará, Fortaleza. CE.

DOI:

https://doi.org/10.5965/223811712022021175

Palavras-chave:

agregados microbianos, bioatividade, aquicultura.

Resumo

Um biofilme perifítico formado em um cultivo de tilápias-do-nilo foi analisado para determinação quantitativa de bactérias e fungos, detecção de substâncias com ação antibacteriana e avaliação de perfis de resistência frente a antibióticos comerciais.  Foi empregado o método de contagem padrão em placas por meio da técnica inoculação em profundidade para a quantificação das bactérias heterotróficas cultiváveis (BHC) e a técnica de espalhamento sobre meio de cultura para a de fungos. Investigou-se a produção de substâncias antibacterianas pela comunidade e a susceptibilidade a antibióticos de amplo espectro, ambos por meio da técnica de difusão em ágar. As concentrações de bactérias e fungos cultiváveis na comunidade de perifíton foram, respectivamente, 1,73×106 UFC/mL e 1,45×102 UFC/mL. O biofilme perifítico mostrou ação antibacteriana contra bactéria indicadora Gram positiva. Os antibióticos Cloranfenicol, Tetraciclina e Cefalotina foram eficientes contra os componentes do biofilme. Entretanto, a comunidade apresentou perfil de resistência ao Imipinem. As bactérias são os componentes dominantes no biofilme perifítico em comparação com os fungos contribuindo com a ciclagem de nutrientes e influenciando a qualidade da água de cultivo. O perifíton possui potencial biotecnológico de ação antimicrobiana.

Downloads

Não há dados estatísticos.

Referências

ADNAN M et al. 2018. Significance and potential of marine microbial natural bioactive compounds against biofilms/biofouling: necessity for green chemistry. Peerj 6: 1-18.

APHA. 1998. American Public Health Association. Microbiological examination of water. In: EATON AD et al. Standard methods for the examination of water and wastewater. 20.ed. Washington: APHA.

ASADUZZAMAN M et al. 2009. Effects of addition of tilapia Oreochromis niloticus and substrates for periphyton developments on pond ecology and production in C/N-controlled freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii farming systems. Aquaculture 287: 371-380.

BILLINGS N et al. 2015. Material properties of biofilms - a review of methods for understanding permeability and mechanics. Reports on Progress in Physics 78: 036601.

CLSI. 2010. Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing. Twentieth Informational Supplement: Supplement M100-S20. Wayne: CLSI.

COSTERTON JW et al. 1994. Biofilms, the customized microniche. Journal of Bacteriology 176: 2137-2142.

CULLER HF. 2010. Formação de biofilmes por Escherichia coli enteropatogência atípica. Dissertação. (Mestrado em Biotecnologia). São Paulo: USP. 113p.

DANTAS LIS et al. 2012. Presença e isolamento de Staphylococcus aureus, Escherichia coli e Salmonella sp. provenientes de filés de tilápia (Oreochromis niloticus) comercializados no mercado modelo Nerival Araújo, Currais Novos/RN. In: VII congresso Norte Nordeste de pesquisa e inovação. Resumos… Palmas: CONNEPI. 8p.

DAVIES D. 2003. Understanding biofilm resistance to antibacterial agents. Nature Reviews Drug Discovery 2: 114-122.

DOWNES MP & ITO K. 2001. Compendium of methods for the microbiological examination of foods. APHA. 4.ed. Washington: American Public Health Association.

FLEMMING HC & WINGENDER J. 2010. The biofilm matrix. Nature Reviews Microbiology 8: 623-633.

GUTTMAN L. 2019. Periphyton For Biofiltration And Fish Feeding in An Integrated Multi-Trophic Aquaculture System: A Case Study in The Gulf of Aqaba. Open Access Journal Of Environmental & Soil Science 3: 413-418.

JAMES GA et al. 1995. Interspecies bacterial interactions in biofilms. Journal of Industrial Microbiology 15: 257-262.

LI Z et al. 2017. Microbial succession in biofilms growing on artificial substratum in subtropical freshwater aquaculture ponds. FEMS Microbiology Letters 364: 1-7.

YU E et al. 2016. Surface-attached and suspended bacterial community structure as affected by C/N ratios: relationship between bacteria and fish production. World Journal of Microbiology and Biotechnology 32: 1-9.

LARA G et al. 2017. The use of different aerators on Litopenaeus vannamei biofloc culture system: effects on water quality, shrimp growth and biofloc composition. Aquaculture International 25: 147-162.

MARTÍNEZ-CÓRDOVA LR et al. 2014. Microbial-based systems for aquaculture of fish and shrimp: an updated review. Reviews in Aquaculture 6: 1-18.

MATA MT et al. 2017. Production of diatom-bacteria biofilm isolated from Seriola lalandi cultures for aquaculture application. Aquaculture Research 48: 4308-4320.

ORTIZ-ESTRADA AM et al. 2020. Bacterial communities and predicted nitrogen metabolism of heterotrophic- and probiotic-based biofilms used for superintensive indoor shrimp culture. Aquaculture Research 52: 334-344.

RIBEIRO ALMS et al. 2009. Avaliação microbiológica da qualidade do pescado processado importado no estado do Rio de Janeiro. Revista Brasileira de Ciências Veterinárias 16: 109-112.

SILVA JLS et al. 2016. Aquatic microbiota diversity in the culture of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) using bioflocs or periphyton: virulence factors and biofilm formation. Acta Scientiarum. Animal Sciences 38: 233-241.

STEWART PS 2002. Mechanism of antibiotic resistance in bacterial biofilms. International Journal of Medical Microbiology 292: 107-113.

TANT CJ et al. 2015. The role of aquatic fungi in transformations of organic matter mediated by nutrientes. Freshwater Biology 60: 1354-1363.

THOMPSON FL et al. 2002. Importance of biofilm for water quality and nourishment in intensive shrimp culture. Aquaculture 203: 263-278.

VERT M et al. 2012. Terminology for biorelated polymers and applications (IUPAC Recommendations 2012). Journal of Pure and Applied Chemistry 84: 377-410.

WESSELING W et al. 2015. Functionalised ceramic spawning tiles with probiotic Pseudoalteromonas biofilms designed for clownfish aquaculture. Aquaculture 446: 57-66.

WU Y. 2017. Periphyton: functions and application in environmental remediation. China: Elsevier.

XUE Z et al. 2012. Multiple Roles of Extracellular Polymeric Substances on Resistance of Biofilm and Detached Clusters. Environmental Science & Technology 46: 13212-13219.

YIN W et al. 2019. Biofilms: The Microbial "Protective Clothing" in Extreme Environments. International Journal of Molecular Sciences 20: 3423.

ZHANG J et al. 2016. Artificial substrates in zero-water-exchange culture system regulate the rearing performance of Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei (Boone, 1931) under the winter indoor condition. Aquaculture Research 47: 91-100.

Downloads

Publicado

2021-07-02

Como Citar

SILVA, Jéssica Lucinda Saldanha da; TORRES RODRÍGUEZ, Marina Teresa; CARVALHO , Fátima Cristiane Teles de; SOUSA, Oscarina Viana de. Avaliação quantitativa e bioatividade de um biofilme perifítico oriundo de piscicultura. Revista de Ciências Agroveterinárias, Lages, v. 20, n. 2, p. 175–179, 2021. DOI: 10.5965/223811712022021175. Disponível em: https://revistas.udesc.br/index.php/agroveterinaria/article/view/19345. Acesso em: 27 nov. 2024.

Edição

Seção

Nota de Pesquisa